¿Qué no se puede hacer?

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¿QUE NO SE PUEDE HACER CON DCW 1 Y 2 ?

• Es una pregunta muy importante para asegurar la eficacia y seguridad de nuestros productos. Aquí le detallo lo que NO se debe hacer con Dual Clean Water 1 (DCW1) y Dual Clean Water 2 (DCW2):

• No mezclar directamente con ciertos químicos en el mismo tanque:

• DCW1 y DCW2 no deben mezclarse simultáneamente con oxidantes fuertes como hipoclorito de sodio (cloro), permanganato, peróxidos (como peróxido de hidrógeno) ni amonios cuaternarios o cualquier otro tratamiento, siempre debe esperar el tiempo de proceso entre cada tratamiento. 

• Tampoco deben mezclarse con ácidos fuertes.

• Razón: Estos químicos pueden inactivar los componentes biotecnológicos de DCW1 y DCW2, reduciendo drásticamente su eficacia.

No aplicar simultáneamente con químicos o bien otros tratamientos:

• Si necesita usar alguno de los químicos mencionados (cloro, ácidos, etc.), debe aplicarlos por separado, dejando un **intervalo de mínimo 30 – 60  minutos o hasta 24 horas** entre la aplicación del químico convencional y la de DCW1 o DCW2. Esto permite que el químico convencional actúe y se disipe antes de introducir nuestros bioproductos.

• No esperar que reemplacen todos los procesos de una PTAR compleja sin evaluación:
• Aunque DCW1 y DCW2 son muy potentes, no son una solución "mágica" que elimine la necesidad de todos los demás procesos en una PTAR compleja (como pretratamientos físicos, aireación, etc.). Su función es optimizar y potenciar estos procesos, o incluso simplificarlos, pero siempre bajo una evaluación técnica.
• No usarlos sin considerar la dosis y el protocolo:
• No se deben aplicar de forma indiscriminada. Es crucial seguir las recomendaciones de dilución y dosificación para cada producto y tipo de agua, ya que una aplicación incorrecta podría no generar los resultados esperados.

• No almacenar en condiciones inadecuadas:
• Evite almacenar los envases a temperaturas extremas (arriba de 25 °C aproximados) o expuestos directamente a la luz solar, ya que esto puede afectar la estabilidad y eficacia de los productos.

• En resumen: La principal restricción es evitar la mezcla directa o simultánea con oxidantes fuertes, ácidos fuertes y amonios cuaternarios. Siempre es mejor aplicar nuestros productos biotecnológicos después de que otros químicos hayan actuado y se hayan disipado.
• Para asegurar la validez y confiabilidad de sus resultados en el análisis de agua, es fundamental utilizar métodos estandarizados y reconocidos. A continuación, le detallo los métodos claros y específicos que debe usar para la Demanda Química de Oxígeno (DQO), Nitrógeno Total (NT), Metales Pesados y E. coli, priorizando las Normas Mexicanas (NMX):

• 1. Demanda Química de Oxígeno (DQO)
• Método Recomendado:NMX-AA-026-SCFI-2010** (Determinación de la Demanda Química de Oxígeno en Aguas Naturales, Residuales y Residuales Tratadas).
• Descripción: Este método mide la cantidad de oxígeno equivalente a la materia orgánica e inorgánica oxidable presente en una muestra de agua, utilizando un agente oxidante fuerte (generalmente dicromato de potasio) en medio ácido y a alta temperatura. El resultado se expresa en miligramos de oxígeno por litro (mg O₂/L). Es un indicador clave de la carga contaminante de un efluente.

• 2. Nitrógeno Total (NT)
• El Nitrógeno Total (NT) se compone de Nitrógeno Kjeldahl (N orgánico + N amoniacal) y Nitrógeno de Nitratos y Nitritos. Para obtener el valor de Nitrógeno Total, se deben realizar los siguientes análisis y sumar sus resultados:

• a) Nitrógeno Kjeldahl Total (NKT):
• Método Recomendado:NMX-AA-079-SCFI-2001 (Determinación de Nitrógeno Total Kjeldahl en Aguas Naturales, Residuales y Residuales Tratadas).
• Descripción: Este método implica la digestión de la muestra con ácido sulfúrico para convertir el nitrógeno orgánico y amoniacal en sulfato de amonio. Posteriormente, el amonio se destila y se cuantifica por titulación o colorimetría.
• b) Nitrógeno de Nitratos y Nitritos:
• Método Recomendado: NMX-AA-099-SCFI-2006 (Determinación de Nitratos y Nitritos en Aguas Naturales, Potables, Residuales y Residuales Tratadas).
• Descripción: Estos compuestos se pueden determinar por métodos colorimétricos o cromatográficos. Los nitratos a menudo se reducen a nitritos antes de la cuantificación.
• Cálculo de Nitrógeno Total (NT):NT = NKT + (Nitrógeno de Nitratos + Nitrógeno de Nitritos)

• 3. Metales Pesados (Ej. Cobre, Zinc, Plomo, Cadmio, Arsénico, Cromo, Mercurio)
• Para la cuantificación de metales pesados, las técnicas instrumentales son las más adecuadas y precisas.

• Método General Recomendado:
• Espectrofotometría de Absorción Atómica (AAS): Para metales específicos como Cobre (NMX-AA-007-SCFI-2013), Zinc (NMX-AA-051-SCFI-2001), Plomo (NMX-AA-051-SCFI-2001), Cadmio (NMX-AA-051-SCFI-2001), Cromo (NMX-AA-051-SCFI-2001), etc.

• Espectrometría de Emisión Atómica con Plasma Acoplado Inductivamente (ICP-OES) o Espectrometría de Masas con Plasma Acoplado Inductivamente (ICP-MS): Estos métodos son más versátiles y permiten analizar múltiples metales simultáneamente con alta sensibilidad. No existe una NMX específica para "metales pesados" en general, sino para cada metal individualmente, pero los laboratorios suelen usar métodos basados en estas técnicas.
• Descripción: Las muestras se preparan (a menudo con una digestión ácida previa para liberar los metales) y luego se introducen en el equipo. La AAS mide la absorción de luz por los átomos del metal, mientras que ICP-OES/MS mide la emisión de luz o la relación masa/carga de los iones, respectivamente.

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• 4. E. coli
• Método Recomendado: NMX-AA-042-SCFI-2015 (Determinación de Organismos Coliformes Totales, Coliformes Fecales y Escherichia coli por la Técnica de Filtración por Membrana).
• Descripción: Este método implica filtrar un volumen conocido de la muestra de agua a través de una membrana con porosidad específica. La membrana se coloca luego en un medio de cultivo selectivo e incubada a una temperatura y tiempo determinados. Las colonias características de E. coli (o coliformes totales/fecales) se cuentan y los resultados se expresan en Unidades Formadoras de Colonias por 100 ml (UFC/100 mL) o Número Más Probable (NMP/100 mL) si se usa la técnica de tubos múltiples (NMX-AA-102-SCFI-2006).

Consideraciones Adicionales:

• Laboratorio Acreditado: Es fundamental que todos estos análisis sean realizados por un laboratorio de pruebas acreditado bajo la norma NMX-EC-17025-IMNC-2018 (o su equivalente internacional ISO/IEC 17025). Esto garantiza la competencia técnica del laboratorio y la validez de sus resultados.
• Muestreo: Asegúrese de seguir estrictos protocolos de muestreo para cada parámetro, utilizando envases adecuados, preservantes si son necesarios y respetando los tiempos máximos de conservación de las muestras.
• Valores Objetivo: Tenga claros los límites máximos permisibles para cada contaminante según la normativa aplicable a su caso (ej. NOM-001-SEMARNAT-2021 para descarga, o criterios específicos para reúso agrícola).

IMPORTANTE:

No se debe usar ESPECTROFOMETRÍA NI COLORIMETRÍA como métodos de medición ni como parte del proceso de medición, especialmente para el caso de mediciones de agua NT y DQO.

EL COSTO OCULTO DE MEDIR MAL EN UNA PTAR

Medir no es un trámite técnico: es lo que define eficiencia, cumplimiento y costos operativos.

Uno de los errores más comunes es analizar Nitrógeno Total (NT) solo con espectrofotometría, sin considerar sus interferencias:

turbidez, materia orgánica, sólidos finos, digestiones incompletas, colorantes, etc.

• Pero hay un problema aún más grave cuando la PTAR usa:
• biológicos
• enzimas o proteínas sintéticas (biotecnología no viva)

• Estos compuestos no son NT, pero sí alteran la absorbancia y pueden generar:
• falsos positivos
• picos amplificados
• valores erráticos
• confusión entre actividad biológica y “NT”
• Cuando la biotecnología está activa, su espectro cambia… y la lectura óptica también.
• Kjeldahl (TKN): el método que confirma la realidad
• A diferencia del método por longitud de onda, Kjeldahl no depende de la absorbancia.
• Digestión química = nitrógeno real.
• Evita interferencias ópticas, proteínas, brumas, color y subproductos.
• Por eso sigue siendo el método de referencia cuando hay biotecnología en operación.
• Lo barato sale caro

• Los errores de medición generan:
• sobredosificación o subdosificación
• diagnósticos incorrectos
• fallas en aireación o recirculación
• aumento del OPEX
• incumplimientos normativos y sanciones
• inestabilidad del proceso

Todo por usar un método óptico no compatible con la química real del sistema.

Cuando en una PTAR hay biotecnología o proteínas sintéticas, 

la espectrofotometría puede engañar. 

Medir bien no cuesta. 

Medir mal es lo que realmente sale caro.